ПРИМЕНЕНИЕ КУЛЬТУР КЛЕТОК ДЛЯ ВИРУСОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ | Vitafarma

Р.Я. Подчерняева, М.В. Мезенцева, И.А. Суетина, О.А. Лопатина. Г.Р. Михайлова,
А.Д. Петрачев, Л.А. Потапова, О.В. Бакланова, Е.Л. Фирсова, О.М. Гринкевич,
Т.Н. Притчина, М.Н. Щетвин, Л.И. Руссу
ФГБУ «НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского» Минздрава России, Москва, cells@rambler.ru

В Лаборатории культур тканей НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского создана Коллекция перевиваемых соматических клеток позвоночных, которая входит в состав Российской коллекции клеточных культур. Для каждой клеточной линии разработан паспорт, согласно международным требованиям. Проводится постоянная работа по улучшению условий хранения и культивирования клеток в зависимости от различных сред, сывороток или их заменителей, а также постоянный мониторинг микоплазм, вируса бычьей диареи и других возбудителей инфекций. Проведен поиск клеточных линий, чувствительных к различным ДНКи РНК-содержащим вирусам, включая вирусы гриппа. На моделях клеточных культур изучалась эффективность различных антивирусных препаратов — амантадина, ремантадина, арбидола, тамифлю, ингаверина, циклоферона, ридостина, неовира, амиксина и 15 нейротропных пептидов, обладающих иммуномодулирующей и противовирусной активностью в отношении вирусов герпеса, гриппа человека и птиц. На моделях культур клеток проводилось изучение закономерностей синтеза регуляторных цитокинов в зависимости от условий культивирования клеток. Совместно с контрольным Институтом им. Л.А. Тарасевича (Москва) была получена вакцинная линия клеток Vеrо(В), охарактеризованная по требованиям ВОЗ. Линия применяется не только для научных исследований, но и для получения первой в стране противогерпетической отечественной вакцины «Витогерпавак». Ключевые слова: клеточные культуры, сыворотки, бессывороточная среда, вирусы, цитокины, вакцина. В настоящее время клеточные культуры находят широкое применение в различных областях биологии, медицины, ветеринарии и биотехнологии. Использование клеточных культур позволяет исследовать биологические процессы, которые сложно, а подчас невозможно, изучить на уровне организма. Важную роль клеточные культуры играют в биотехнологии при производстве многих вакцин, тест-систем и биологически активных веществ. Культуры клеток применяют для диагностики заболеваний различной этиологии, в качестве тест-объектов при испытании новых фармакологических, лечебных и косметических средств, а также пищевых добавок. Все это требует стандартизации работы с клеточными культурами в специально оборудованных лабораториях. Для успешного сохранения исходных или направленно измененных свойств клеточных линий, а также для получения воспроизводимых экспериментальных результатов необходимо зафиксировать данное состояние культивируемых клеток. Функцию поддержания исходных свойств клеток и проведения контроля за их состоянием осуществляют Коллекции клеточных культур, сохраняющие эталонные клеточные линии, которые содержатся в криоконсервированном состоянии.

Еще в 1989 г. в нашей стране были разработаны методические указания: «Аттестация перевиваемых клеточных линий-субстратов производства и контроля медицинских иммунобиологических препаратов» (РД42-28-10-89), выполнению которых и по сей день придерживаются в работе с культурами клеток. В нашей Лаборатории культур тканей НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского подготовлены методические рекомендации: «Работа с клеточными культурами (культивирование первичных и перевиваемых клеток)» (1) и «Технологический процесс криоконсервации перевиваемых клеточных линий» (2), которые были утверждены на Ученом совете института и на Лабораторном Совете Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. На базе нашей лаборатории имеется Коллекция перевиваемых соматических клеток позвоночных. Фонды коллекции представлены в «Каталоге Всесоюзной коллекции клеточных культур» (3), в «Human and Animal cell lines Catalogue» (4) и в «Каталоге Российской коллекции клеточных культур (РККК)» (5). Для каждой клеточной линии разработан паспорт, согласно международным требованиям, где, в частности, подробно описаны условия культивирования. Одним из ингредиентов, наиболее нестабильных при культивировании клеток, является сыворотка. Ее свойства существенно зависят от источника получения. Учитывая нестандартность сывороток, по рекомендации ВОЗ мы использовали малосывороточные питательное среды из гидролизатов соевой и рисовой муки, разработанные в НПО «Вектор» под руководством Л.П. Сандахчиева.

Оптимизированный состав этих сред представляет собой определенные концентрации ферментативных гидролизатов, растворенных в сбалансированных растворах Эрла или Хенкса, в которые дополнительно добавлены витамины, микроэлементы и отдельные аминокислоты. Показано, что для пролиферации клеток МДСК (клетки почки собаки) при культивировании с соевой средой достаточно добавление только 2% эмбриональной бычьей сыворотки (FBS), а для пролиферации клеток Vero (клетки почки африканской зеленой мартышки) требуется добавление 5% FBS. Таким образом, использование соевой среды позволяет снизить количество сыворотки, необходимой для успешного культивирования этих клеток с 10% до 2—5%. Надо отметить, что морфология и кариология клеток МДСК и Vero не менялась при использовании соевой среды (6—8). Для проведения биотехнологических исследований на современном уровне желательно для культивирования клеток применять полностью бессывороточные среды. Список таких сред, как правило, широко представлен во многих каталогах, но, к сожалению, их цена слишком высока. Поэтому мы провели работу с применением отечественной бессывороточной среды «Гибрис-2» производства ООО «ПанЭко».

Адаптация клеток к этой среде проводилась поэтапно. Так, для получения адаптированной линии клеток МДСК к среде «Гибрис-2» было проведено 4 пассажа с 3% FBS, 3 пассажа с 2% FBS, 5 пассажей с 1% FBS и 6 пассажей без сыворотки. Показано, что индекс пролиферации (ИП), идентичный контрольным значениям, был отмечен только в присутствии 1—2% FBS, а культивирование без сыворотки не приводило к контрольным показателям. Возможно, требуется большее количество пассажей для полной адаптации клеток к бессывороточной среде (9,10). С целью оптимизации работы с нативными сыворотками было исследовано влияние сывороток северных оленей, суягных овец, свиней и морских котиков на пролиферативную активность 2-х клеточных линий — ЛЭЧ (клетки легких эмбриона человека) и Vero. Контролем служили эксперименты с использованием сыворотки FBS.

Было показано, что сыворотки из крови северных оленей можно успешно использовать для культивирования клеток Vero, которые наиболее часто применяются для биотехнологических целей. Однако вопрос стандартизации условий культивирования клеток в зависимости от наличия доброкачественных сывороток или их заменителей не утрачивает своего значения. Поэтому, были проведены исследования по получению и применению так называемых ростстимулирующих белков (РБ), выделенных из сывороток северных оленей, суягных овец и свиней с помощью водного раствора полиэтиленгликоля с M.м. 4000—8000 Д, который способствует также удалению ряда контаминирующих агентов. РБ представлены главным образом альбуминовой и α-глобулиновой фракциями, которые являются белковыми факторами роста, влияющими на пролиферацию клеток.

Изучена пролиферативная активность 7 клеточных линий после 5-ти последовательных пассажей в среде с РБ из сывороток свиней, суягных овец и оленей без добавления сыворотки FBS и с 2% FBS. Показано, что для получения показателей индекса пролиферации (ИП), равнозначных с контролем, все же необходимо добавление 2% сыворотки FBS. Показатели ИП разных клеточных линий различались незначительно. Лучшие показатели ИП наблюдались в экспериментах с РБ из сывороток оленей и свиней (11,12). При работе с культурами клеток не менее важным является применение ферментов для диспергирирования или отделения клеток от субстрата при их пересевах. Для этих целей, как известно, можно применять трипсин или химопсин.

Недостатком этих ферментов является то, что сырье для их получения не стандартизовано и не исключает наличия в них патогенных примесей. Поэтому, совместно с сотрудниками НПО «Вектор», мы провели изучение полученного ими препарата «Коллаза», который представляет собой комплекс протеолитических ферментов с коллагенолитической активностью, выделенных из экологически чистого гепатопанкреаса Камчатского краба с помощью хроматографической очистки и ультрафильтрации. При применении этого фермента по сравнению с трипсином количество жизнеспособных клеток было в 2—2,5 раза больше и требовалось более короткое время воздействия. При этом морфология культивируемых клеток 10 изученных линий оставалась без изменения. Таким образом, использование «Коллазы» при культивировании оказалось более эффективным, чем использование трипсина. Существенной проблемой при работе с клеточными культурами является микробная контаминация клеток, т.к. она влияет на метаболизм клеток, вызывает хромосомные аберрации и изменяет клеточные функции.

Частым контаминантом клеточных культур оказывается вирус бычьей диареи (ВД), относящийся к роду Pestivirus семейства Flaviviridae и являющийся возбудителем вирусной диареи — болезни слизистых крупного рогатого скота. Этот вирус может проникать в клетки из нативных сывороток крупного рогатого скота и даже FBS, добавленных в ростовую среду (13). Так, с помощью метода ПЦР было выявлено наличие ВД в коммерческих FBS, полученных из различных фирм (ПАНЭКО, ООО Биолот, Gibco, Biowest, HyClone, Amimed, Sigma). В сыворотках FBS фирмы ПАНЭКО ВД обнаруживается как до, так и после прогревания в водяной бане при 56°С в течение 30 и даже 60 минут (14). Мы проводили определение ВД с помощью метода ПЦР в клеточных линиях из нашей коллекции.

Иследовались диплоидные клетки легкого и фибробласты эмбриона человека, клетки онкогенных и лимфобластоидных линий человека, перевиваемые клетки обезьян, крупного рогатого скота, собаки, свиньи, крыс, мышей, хомячка, кролика, кошки, овцы, хорька и кур. Клетки хранились в жидком азоте в течение различного периода. Было показано, что диплоидные клетки человека и ряд перевиваемых клеток барана, свиньи, хомячка, обезьян и человека не были контаминированы ВД. Однако в 30% клеточных линий из 83-х изученных был выявлен ВД, причем чаще всего в более поздних закладках. Очевидно, при культивировании этих клеток использовались сыворотки, содержащие этот вирус (15). Одним из пунктов паспорта клеточной линии является чувствительность к репродукции вирусов. Изучение чувствительности разных клеточных линий к определенным вирусам крайне важно для приготовления противовирусных вакцин.

Вирусам свойственен определенный круг хозяев, узкий для одних видов и очень широкий для других. Генетический аппарат вирусов представлен как ДНК, так и РНК в одно- или двунитевой, линейной или циркулярной, моно- или фрагментарной формах. К РНК- содержащим вирусам позвоночных относятся 20 видов вирусов (арена, артери, астро, бирна, борна, бунья, геле, дельта, калици, корона, нода, ортомиксо, парамикса, рабдо, рео, ретро, тога, фило и флави вирусы), включая субвирусные агенты вероиды, сателлиты и прионы. К ДНК-содержащим вирусам позвоночных относятся 11 видов вирусов (адено, анелмо, асфар, гепадна, герпес, иридо, паппилома, парво, покс, полиома и цирко вирусы). Название этих видов вирусов связано либо с их морфологией, либо с местом их изоляции. Интерес к проблеме поиска клеточных линий, чувствительных к различным ДНК- и РНК-содержащим вирусам, позволил нам суммировать различные данные и представить их в виде таблиц 1—4 (16,17).

Обычно различают острую и хроническую вирусную инфекцию. Острая инфекция характеризуется цитопатическим действием (ЦПД), которое возникает в результате репродукции вирусов и приводит к деструктивным изменениям зараженных клеток и их гибели. При хроническом течении инфекции вирусы не вызывают гибели клеток. Клетки долго остаются жизнеспособными и внешне не отличаются от зараженных. Характер ЦПД при различных вирусных инфекциях неодинаков. Например, при репродукции парамиксовирусов и герпес-вирусов наблюдается слияние клеток с образованием синцития, при энтеро- и рео-вирусах — сморщивание и деструкция клеток, аденовирусы приводят к аггрегации клеток. Обычно вирусные включения выявляются в цитоплазме или ядре клеток при специальном окрашивании по Романовскому. Подробнее остановимся на репродукции в клетках вирусов гриппа. Известно, что в мире постоянно отмечается сложная эпидемиологическая ситуация с распространением вирусов гриппа различных типов (18—20). Изучением чувствительности различных клеточных культур к разным штаммам вируса гриппа мы занимались, начиная с 1990 г., когда был изучен спектр чувствительности ряда клеточных линий человека и животных к разным эталонным штаммам вирусов гриппа A (H1N1, H2N2, H3N2), гриппа В и С, изолированным во время различных эпидемий. Так, было показано, что эталонный штамм вируса гриппа A/PR8/34 (H1N1) активно репродуцировался в клетках животных (МДСК, СПЭВ, ВНК-21, ПЭК и Vero) и в клетках человека Chang Conjunctiva (клон 1-5C-4) и ФЭЧ в отличие от эталонного штамма A/FM1/47(H1N1). Отечественный штамм вируса гриппа А/СССР 012/79(H1N1) репродуцировался в клетках МДСК до 4,5 lg ТЦД50 и до 3,5 lg ТЦД50 в клетках ЛЭЧ. Другой отечественный штамм А/СССР 03/81 (H1N1) слабее репродуцировался в клетках МДСК (2,0 lg ТЦД50), но размножался в клетках человека Chang Conjunctiva и ЛЭЧ до титра 3,5 lg ТЦД50. Эталонный вирус гриппа А/Сингапур1/57(H2N2) наиболее активно репродуцировался в клетках СПЭВ (3,5 lg ТЦД50) и МДСК (2,5 lg ТЦД50). Штамм А/СССР05/80 (H3N2) активно репродуцировался в клетках МДСК (4,5 lg ТЦД50) и ЛЭЧ (3,5 lg ТЦД50). Штамм А/Филиппины2/82(H3N2) в основном активно репродуцировался в клетках МДСК (3,5 lg ТЦД50). Эталонный вирус гриппа В (штамм В/Ли/40) репродуцировался в клетках животных МДСК, СПЭВ, ВНК-21, ПЭК до титров 2,5; 3,5; 2,5; 1,5 lg ТЦД50 соответственно и в клетках человека ЛЭЧ до титра 3,5 lg ТЦД50. Другой эталонный вирус гриппа штамм В/Сингапур 222/71 также репродуцировался в клетках животных (МДСК, СПЭВ, ВНК-21 и ПЭК) и в клетках человека ЛЭЧ и Chang Conjunctiva. Отечественный штамм В/СССР 100/83 размножался практически в этих же клетках. Эталонный вирус гриппа С (штамм Тейлор1233/47) репродуцировался в клетках МДСК, СПЭВ и Chang Conjunctiva до титра 2,5 lg ТЦД50. Таким образом, было показано, что для каждого штамма вирусов гриппа даже одного типа (Н1, Н2, Н3) имеется наиболее пермиссивная клеточная линия для изучения репродукции вирусов. Еще в 1991 г. нами было показано, что вирусы гриппа птиц могут размножаться в ряде клеточных культур. В частности, вирус гриппа птиц, изолированный в 1976 г. в нашей стране, с 5-м типом гемагглютинина (штамм А/морской голубок/Астрахань/76(Н5М1) репродуцировался не только в клетках МДСК до 4,5 lgТЦД50, но и в других линиях: клетках почки свиньи — СПЭВ (3,5 lg ТЦД50), обезьяны — 4647 (3,5 lg ТЦД50) и сирийского хомячка — ВНК-21 (4,5 lg ТЦД 50). Эти показатели практически не отличались от репродукции птичьего вируса H5N1 (штамм А/крачка/ЮА/61), активно размножающегося в клеточных линиях МДСК (4,5 lg ТЦД50), СПЭВ (4,5 lg ТЦД50), L929(4,0-4,5 lg ТЦД50) и ВНК-21 (4,0 lg ТЦД50). Известно, что наиболее чувствительной и перспективной моделью для изучения вирусов гриппа являются клетки хорька. Поэтому нами для изучения птичьего вируса H5N1 применялась линия нервных клеток мозга хорька (Mpf). Рядом исследователей было отмечено, что с 1998 г. во время эпидемий гриппа, вызванного вирусом A(H3N2), среди больных нередко наблюдались проявления неврологического синдрома (21). В связи с этим, мы изучили репродукцию вирусов гриппа человека H1N1, H3N2 и В, выделенных не только в последние, но и более ранние эпидемические годы, на модели нервных клеток хорька (линия Mpf), а также глиальных клеток глиобластомы человека (линия GL6) в сравнении с двумя другими клеточными линиями: клеток почек собак (МДСК) и клеток легкого эмбриона человека (ЛЭЧ). Показано, что вирусы гриппа H1N1 репродуцируются в культуре клеток линии Mpf в такой же степени, как и в клетках MДCK, но не размножаются в глиальных клетках человека (GL6). Интересно, что не наблюдалось различий в степени репродукции вирусов гриппа H1N1, выделенных в эпидемии 1934, 1947, 1977 и 1999 гг., несмотря на различие их антигенных и биологических свойств. Вирусы гриппа H3N2, также как и вирусы H1N1, репродуцируются в клетках Mpf практически в той же степени, как и в клетках MДCK, и несколько слабее в линии клеток ЛЭЧ. Отличий в активности репродукции штаммов, выделенных в эпидемии гриппа H3N2 (1968, 1999 и 2002 гг.), также не отмечено, как и у вирусов гриппа H1N1. Вирусы гриппа В репродуцируются только в клетках MДCK и значительно слабее в клетках ЛЭЧ. Интересно, что вирусы гриппа В совсем не размножаются в клетках линий GL6 и Mpf в отличие от вирусов гриппа A (H1N1 и H3N2). При этом различий в репродукции штаммов вирусов гриппа В, изолированных в эпидемии 1972, 1998 и 1999 гг., не наблюдалось, также, как и у штаммов вирусов гриппа А (22). Таким образом, впервые показано, что для вирусов гриппа А чувствительной клеточной моделью являются культивируемые нервные клетки мозга хорька, которые могут быть использованы как для изоляции этих вирусов, так и для проведения различного рода биологических исследований. Интересно, что для птичьего вируса H5N1, как и для вируса гриппа человека типа В, эта клеточная линия не является пермиссивной. С 1997 г. отмечаются вспышки птичьего гриппа (H5N1, H5N3, H7N7, H9N2), которые не только приводили к гибели домашних птиц, но и вызывали случаи заболевания человека с высоким уровнем летальности. После выделения нового вируса гриппа птиц с 5-м типом гемагглютинина, изолированного, в частности, от больной утки (штамм А/утка/Новосибирск 56/05 H5N1), была выявлена чувствительность к этому вирусу 16-ти культур клеток человека и животных. В сравнительном аспекте в этих же культурах изучили репродукцию штамма А/крачка/ЮА/61 (H5N3), изолированного в 1961 г. Показано, что Штамм А/утка/Новосибирск 56/05 имеет более широкий спектр хозяев, чем штамм А/крачка Ю/А/61. Наиболее чувствительными клеточными линиями животных являются клетки почки собаки (МДСК), свиней (СПЭВ), обезьян (Vero), кошек (CRFK и СС-81) и первичные клетки куриных фибробластов (ФЭК). Из клеточных культур человека чувствительными являются клетки карциномы кишечника (НТ 29), Chang Conjunctiva и ЛЭЧ. Штамм 2005-го г. изоляции слабо размножался в других клетках человека (Chang liver и 2-х линиях гепатомы печени — СН5, Lunet), но, в отличие от штамма А/крачка ЮА/61, репродуцировался в клетках мозга хорька (Mpf) до титра 3,0 lg ТЦД50 (17,22). Из полученных данных можно заключить, что вирус 2005-го года изоляции обладает большей тропностью к ряду клеток животных и человека и потенциально может быть более вирулентным при эпизоотии и эпидемиях, вызванных птичьим вирусом с 5-м типом гемагглютинина. Нами была изучена также чувствительность 19 перевиваемых клеточных линий человека и животных к новому метапневмовирусу (HMPV), изолированному в нашей стране из носоглоточного смыва больного. Показано, что чувствительными культурами оказались клетки Chang conjunctiva (клон 1-5С-4) и клетки линии CRFK с титром 1,2 lg ТЦД50. В остальных клеточных линиях репродукция вируса была менее 1,0 lg ТЦД50. На протяжении многих лет на моделях клеточных культур нами проводились исследования по изучению различных антивирусных препаратов (амантадина, ремантадина, арбидола, тамифлю, ингаверина, циклоферона, ридостина, неовира, амиксина и др.). В последнее время при создании новых лекарственных средств изучено 15 нейротропных пептидов, обладающих противовирусной активностью в отношении вирусов герпеса, гриппа человека и птиц (23). Помимо этого, в течение ряда лет нами на моделях культур клеток проводилось изучение экспрессии генов различных цитокинов (24—26). Мы исследовали перевиваемые клеточные линии L-41 (клетки костного мозга, выделенные от больного лейкемией, клон J-96), НеLа, МДСК, L-929 и ЛЭЧ после первого и 10-го пассажей культивирования. В этих линиях клеток в динамике определяли мРНК цитокинов: ИФН-α, ИФН-γ, ФНО-α, ИЛ-1β, ИЛ-2, ИЛ-4, ИЛ-6, ИЛ-8, ИЛ-10, ИЛ-12, ИЛ-18 с помощью метода полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР). Было отмечено различие в экспрессии генов цитокинов на разных стадиях культивирования клеток в зависимости от клеточной линии. Так, при пассировании клеток L41 угнетался синтез мРНК антивоспалительного цитокина ИЛ-4, но активировались мРНК ИЛ-1β, ИЛ-8, ИЛ-18, секретируемые клетками макрофагального типа. Особенно заметно изменялся цитокиновый профиль в культуре клеток МДСК после 10-го пассажа, в том числе не обнаруживались конститутивно вырабатываемые мРНК ИЛ-8, ИЛ-10, ИЛ-12 и ИЛ18, которые ответственны за процессы апоптоза. При длительном пассировании клеток L-929 была дополнительно отмечена экспрессия гена противовоспалительного цитокина ИЛ-6. Известно, что в отличие от перевиваемых клеточных линий, диплоидные клетки млекопитающих в процессе пассирования претерпевают ограниченное число клеточных делений перед тем, как переходят в нечувствительное непролиферирующее состояние. Они имеют ограниченную продолжительность жизни и не растут после определенного числа пассажей, отражающего предельное число удвоений клеточных популяций для данной линии. В течение процесса старения показатели функциональной активности этих клеток претерпевает как количественные, так и качественные изменения. Нами показано, что диплоидная клеточная линия легкого эмбриона человека (ЛЭЧ) после первого пассажа продуцирует 7 цитокинов: ИФН-α, ИЛ-1β, ИЛ-2, ИЛ-6, ИЛ-8, ИЛ-10, ИЛ-18. После 15 пассажа у этих клеток угнетался синтез ИЛ-8 и ИЛ-18, а после 23-го пассажа дополнительно угнетался синтез ИЛ-2, ИЛ-10 и ИЛ-18. Исходя из этих данных, следует учитывать иммунобиологические изменения в длительно пассируемых клетках, которые влияют на их пролиферацию и жизнеспособность и, соответственно, на чувствительность к репродукции вирусов. Учитывая, что с 1995 г. ВОЗ рекомендует разрабатывать вакцины от гриппа с использованием в качестве субстрата перевиваемых культур клеток, аттестованных в соответствии с международными требованиями, нами совместно с контрольным Институтом им. Л.А. Тарасевича (Москва) была получена вакцинная линия клеток Vеrо(В), охарактеризованная по требованиям ВОЗ. 200 ампул с клетками этой линии были заложены в жидкий азот в виде посевного и рабочего банков (27). Линия применяется не только для научных исследований, но и для получения первой в стране противогерпетической отечественной вакцины «Витогерпавак» (28). При сравнительном изучении вакцины «Витагерпавак» и противогерпетической вакцины, приготовленной в Институте вакцин и сывороток (Санкт-Петербург) на первично-трипсинизированных клетках куриных эмбрионов, показано, что в клетках Vero(B) вирус герпеса репродуцировался активнее на 1,5-2,0 lg ТЦД50. В нашей стране культуры клеток используются для приготовления большого количества диагностических препаратов и тест-систем для выявления микоплазм, ВИЧ, вирусов герпеса, гепатита А, гриппа, RS, аденовирусов. Разработаны также тест-системы для выявления антител у больных клещевым энцефалитом, лихорадкой Западного Нила, крымской геморрагической лихорадкой, Денге, Чикунчунья, тест-системы для выявления антигенов перечисленных вирусов в переносчиках и различные вакцины: против полиомиелита, гепатитов А и В, кори, паротита, краснухи, гриппа, клещевого энцефалита, герпеса и др. (27). Следует отметить, что при изучении чувствительности к вирусам на моделях клеточных культур и приготовлении различных медико-биологических препаратов необходимо использовать чистые, паспортизованные линии клеток и соблюдать оптимальную технологию их культивирования, а также использовать генетически однородную популяцию вирусов. В заключение надо подчеркнуть, что наличие в нашем институте Коллекции перевиваемых соматических клеток позвоночных дает возможность проводить широкий спектр исследований в области вирусологии, иммунологии, молекулярной биологии, био- и нанотехнологии (23—34).
Список литературы
1. Работа с клеточными культурами (культивирование первичных и перевиваемых клеток).
Методические рекомендации. М., 2009, 17 с.
2 Технологический процесс криоконсервации перевиваемых клеточных линий.
Методические рекомендации. М, 2009, 15 с.
3. Каталог Всероссийской коллекции клеточных культур, С. Петербург, Наука, 1991.190 с.
4. Human and Animal cell lines Catalog, Interlay Project, 1993.
5. Каталог Российской Коллекции клеточных культур (РККК), С. Петербург, Омск, 1999.
6. Данлыбаева Г.А., Мазуркова Н.А., Мартюшина P.O., Трошкова Г.П.,
Подчерняева Р.Я. Питательная среда на основе гидролизата рисовой муки для
культивирования клеток и чувсвительности к вирусам гриппа. Клеточные технологии, биология
и медицина, 2009, 2: 113—117.
7. Михайлова Г.Р., Мазуркова Н.А., Подчерняева Р.Я., Рябчикова Е.И., Трошкова Г.П.,
Шишкина Л.Н. Морфологическая и кариологическая характеристики клеток MDCK и Vero(В)
при культивировании в питательных средах на основе растительных гидролизатов. Вопросы
вирусологии. 2011, 2: 9—14.
8. Михайлова Г.Р., Подчерняева Р.Я., Мазуркова Н.А., Лопатина О.А., Фирсова Е.Л.
Сравнительное изучение кариологических характеристик клеток Vero(В), восстановленных в
различных питательных средах после длительной криоконсервации. Информационный
бюллетень «Клеточные культуры», Санкт–Петербург, 2013, 29: 79—85.
9. Подчерняева Р.Я., Бакланова О.В., Глушенко Л.А., Исаева Е.И., Честков В.В.,
Табаков В.Ю., Михайлова Г.Р. Репродукция вирусов гриппа в клетках МДСК,
адаптированных к росту в бессывороточной среде «Гибрис-2». Вопросы вирусологии. 2010:
47—49.
10. Подчерняева Р.Я., Данлыбаева Г.А., Мазуркова Н.А., Бакланова О.В.. Честков ВВ..
Табаков В.Ю. Адаптация клеток к росту в мало- и бессывороточной средах. Инф. бюллетень
«Клеточные культуры». 2010, 25: 70—74.
11. Исаева Е.И., Мазуркова Н.А., Скарнович М.О., Трошкова Г.П., Шишкина Л.Н.,
Подчерняева Р.Я. Оптимизация роллерного культивирования вакцинных штаммов вирусов
гриппа А и В в культурах клеток MDCK и Vero при использовании компонентов растительного
происхождения. Биотехнология. 2010, 6: 21—27.
12. Мазуркова Н.А., Сумкина Т.П., Трошкова Г.П. Разработка питательной среды на
основе соевого гидролизата, полученного с использованием бромелаина, для клеток MDCK.
Тезисы Международной научной конференции «Новые технологии, инновации, изобретения»,
Мальдивские острова, «Международный журнал прикладных и фундаментальных
исследований», 2011, 6: 38—39.
13. Сергеев В.А., Непоклонов Е.А., Алипер Т.И. Вирусы и вирусные вакцины. М. 2007,
522 с.
14. Подчерняева Р.Я., Урываев Л.В., Дедова А.В., Дедова Л.В, Ионова К.С., Михайлова
Г.Р., Парасюк Н.А., Гринкевич О.М., Селиванова Т.К., Гребенникова Т.В. Петрачев А.Д.,
Щетвин М.Н. Определение микоплазм и вируса бычьей диареи в коллекционных клеточных
линиях. Инф. бюллетень «Клеточные культуры», С.Петербург, 2011, 27: 80—88.
15. Урываев Л.В., Ионова К.С., Дедова А.В., Дедова Л.В., Селиванова Т.К., Парасюк
Н.А., Мезенцева М.В., Костина Л.В., Гущина Е.А., Подчерняева Р.Я., Гребенникова Т.В.
Анализ контаминации клеточных культур пестивирусом BVDV и микоплазмами. Вопросы
вирусологии, 2012, 57, 5: 15—21
16. Подчерняева Р.Я.,Лопатина О.А. Чувствительность культивируемых клеток к вирусам.
В кн. «Методы культивирования клеток», СПб, 2008: 84—95.
17. Дерябин П.Г., Львов Д.К., Исаева Е.И., Данлыбаева Г.А., Подчерняева Р.Я..
Щелканов М.Ю. Спектр клеточных линий позвоночных, чувствительных к высокопатогенным
вирусам гриппа А/крачка/ЮА/61(Н5№) и А/крачка/Новосибирск 56/05( H5N1). Вопросы
вирусологии, 2007, 1: 45—48.
18. Львов Д.К., Бурцева Е.И., Щелканов М.Ю., Прилипов А.Г., Колобухина Л.В.,
Малышев Н.А., Базарова М.В., Меркулова Л.Н., Дерябин П.Г., Кузьмичев А.Г.,
Федякина И.Т., Гребенникова Т.В., Усачев Е.В., Садыкова Г.К., Шевченко Е.С.,
Трушакова С.В., Лаврищева В.В., Альховский С.В., Самохвалов Е.И., Белякова Н.В.,
Иванова В.Т., Оскерко Т.А., Латышев О.Е., Беляев А.М., Беляев А.Л., Феодоритова Е.Л.
Распространение нового пандемического вируса гриппа A/H1N1 М в России. Вопросы
вирусологии , 2010, 3: 4—10.
19. Львов Д.К., Бурцева Е.И., Лаврищева В.В. Информация Центра экологии и
эпидемиологии гриппа Института вирусологии им. Д.И. Ивановского РФ АМН об итогах
эпидемического сезона 2009—2010 гг. по гриппу и ОРВИ в мире и в России. Вопросы
вирусологии, 2011, 1: 44—49.
20. Даниленко Д.М., Смирнова Т.Д., Гудкова Т.М., Еропкин М.Ю., Киселев О.И.
Сравнительное изучение чувствительности клеточных линий различного происхождения к
вирусам пандемического гриппа H1N1, вирусам гриппа птиц, свиней, человека. Вопросы
вирусологии, 2011, 4: 14—19.
21. Каверин Н.В., Смирнов Ю.А., Межвидовая передача вируса гриппа А и пандемия
гриппа. Вопросы вирусологии 2003, 3: 4—10.
22. Подчерняева Р.Я., Исаева Е.И., Данлыбаева Г.А., Михайлова Г.Р. Репродукция
вирусов гриппа в культуре клеток мозга хорька (Mpf). Ветеринарная патология, 2006, 1: 107—
109.
23. Мезенцева М.В., Андреева Л.Н., Подчерняева Р.Я., Исаева Е.И., Шаповал И.М.,
Щербенко В.Э., Мясоедов Н.Ф. Нейротропный пептид, обладающий антивирусной
активностью в отношении гриппа человека и птиц при герпесвирусной инфекции. Инфекция и
иммунитет, 2011,1: 81—84.
24. Мезенцева М.В., Подчерняева Р.Я., Урываев Л.В., Щербенко В.Э., Зуев В.А.
«Направленная коррекция цитокиновой регуляторной сети при вирусных инфекциях». Вестник
Российской Академии Естественных наук, 2011, 11, 1: 9—13.
25. Подчерняева Р.Я., Мезенцева М.В. Клеточные культуры как модель исследования
механизмов синтеза цитокинов. Сборник «Интерфероны 2011», М. 2012: 417—424.
26. Руссу Л.И., Мезенцева М.В., Подчерняева Р.Я. Исследование механизмов синтеза
цитокинов на моделях перевиваемых и первичных кожно-мышечных клеточных линиях.
Медицинский академический журнал. Приложение. Материалы II-й Всероссийской научной
конференции молодых ученых: ―Проблемы биомедицинской науки третьего тысячелетия.‖
Санкт-Петербург, 2012: 398—400.
27. Подчерняева Р.Я., Хижнякова Т.М., Михайлова Г.Р., Шалунова Н.В., Петручук Е.М.,
Бердникова З.Е. Линия клеток Vero(B) для приготовления медикобиологических препаратов,
Вопросы вирусологии, 1996, 4: 183—185.
28. Бархалева О.А., Ладыжинская И.П., Воробьева М.С., Шалунова Н.В.,
Подчерняева Р.Я., Михайлова Г.Р., Хорошева Т.В., Баринский И.Ф. «Витагерпавак» первая
отечественная вакцина на перевиваемой линии клеток Vero(B). Вопросы вирусологии, 2009, 5:
33—37.
29. Бобринецкий И.И., Морозов Р.А., Селезнев А.С., Подчерняева Р.Я., Лопатина О.А
Исследование пролиферативной активности и жизнеспособности клеток фибробласта и
глиобластомы на различных типах углеродных нанотрубок. Бюллетень экспериментальной
биологии и медицины. 2012, 153, 2: 227—232.
30. Бобринецкий И.И., Морозов Р.А., Селезнев А.С., Подчерняева Р.Я., Лопатина О.А.
Перспективы использования углеродных нанотрубок в качестве каркасного материала в
инженерии биологических тканей. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2011,
6, 1: 85—90.
31. Бобринецкий И.И., Селезнѐв А.С., Гайдученко И.А., Федоров Г.Е.,
Домантовский А.Г., Пресняков М.Ю., Подчерняева Р.Я., Михайлова Г.Р., Суетина И.А.
Исследование взаимодействия нервных клеток с сетками углеродных нанотрубок,
полученными при химическом осаждении из газовой фазы. Биофизика, 2013, 58 (3): 524—530.
32. Руссу Л.И., Мезенцева М.В., Егорова Е.М., Суетина И.А., Потапова Л.А., Сосенкова
Л.С., Гущина Е.А. Влияние наночастиц серебра на экспрессию генов цитокинов в клетках
фибробластов эмбриона человека. Сборник трудов Всероссийской научной конференции
молодых ученых: «Медико-биологические аспекты химической безопасности». СанктПетербург, 2013: 253—254.
33. Руссу Л.И., Суетина И.А., Потапова Л.А., Остроумов С.А., Мезенцева М.В. Изучение
in vitro потенциального действия на иммунитет наночастиц окислов металлов Cu и Fe.
«Инновации в науке» № 10 (23) Сборник статей по материалам XXVI Международной научнопрактической конференции. Новосибирск, 2013: 23—28.
34. Mezentseva M.V., Suetina I.А., Russu L.I., Firsova E.L., Gushhina Е.А. Effect of single
walled carbon nanotubes on the biological properties of the cell cultures of human embryonic
fibroblasts. 3rd International Scientific and Practical Conference «Science and Society» ISPC 2013,
3:175—184.

Похожие статьи

Вакцинотерапия вируса

Вакцинотерапия вируса простого герпеса: от прошлого до настоящего. Где мы? Обзор литературы А.м.н. Е.В.Мелехина, Е.Ю.Солдатова, к.м.н. А.А.Музыка, А.м.н. Ж.Б.Понежева ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, Москва РЕЗЮМЕ Рецидивирующее течение инфекции, вызванной вирусом простого герпеса 1 и 2 типов, является актуальной медико-социальной проблемой. К настоящему времени в арсенале врачей существует не так много препаратов прямого противовирусного действия, имеющих Вакцинотерапия вируса

Подробнее

Положение об Антикоррупции

ПОЛОЖЕНИЕ О ПРОТИВОДЕЙСТВИИ КОРРУПЦИИ 1. Назначение 1.1. Настоящее Положение о противодействии коррупции (далее–Положение) в АО «ФИРМА «ВИТАФАРМА» (далее по тексту –Компания) разработано в целях принятия мер по предупреждению коррупции. 1.2. Антикоррупционная политика Компании представляет собой комплекс взаимосвязанных принципов, процедур и конкретных мероприятий, направленных на предупреждение коррупции, в том числе выявление и последующее устранение причин коррупции Положение об Антикоррупции

Подробнее

Рефракционная хирургия и офтальмология

Главный редактор: В. Н. Трубилин — д. м. н., профессор Заместители главного редактора: А. А. Каспаров — д. м. н., профессор, академик РАЕН Е. В. Смиренная — д. м. н. РЕДАКЦИОННАЯ КОЛЛЕГИЯ М. М. Бикбов — д. м. н., профессор В. В. Егоров — д. м. н., профессор И. М. Корниловский — д. м. н., Рефракционная хирургия и офтальмология

Подробнее

«Современные методы диагностики, лечения кожных болезней и инфекций, передаваемых половым путем

Сборник научных трудов под общей редакцией д.м.н., проф. Абдрахманова Р.М. Скачать в PDF

Подробнее

ГЕРПЕСВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ

Т. Г. Филатова Скачать в PDF

Подробнее

Вакцинопрофилактика (общие и частные вопросы, проблемы и перспективы)

В.П. Малый, д.м.н., профессор, зав. кафедрой инфекционных болезней Харьковской медицинской академии последипломного образования, профессор кафедры общей и клинической иммунологии и аллергологии медицинского факультета Харьковского национального университета имени В.Н. Каразина Скачать в PDF

Подробнее

ВАКЦИНА КАК СРЕДСТВО ИММУНОКОРРЕКЦИИ ПРИ ГЕРПЕТИЧЕСКИХ ИНФЕКЦИЯХ

И. Ф. Баринский, Л. М. Алимбарова, А. А. Лазаренко, О. В. Сергеев, Ф. Р. Махмудов, Э. Ю. Мордвинцева Скачать в PDF

Подробнее

ГЕРПЕТИЧЕСКАЯ ИНФЕКЦИЯ У ДЕТЕЙ. СОВРЕМЕННЫЕ ВОЗМОЖНОСТИ ТЕРАПИИ

Л. В. Крамарь, А. А. Арова, О. А. Карпухина Скачать в PDF

Подробнее

Герпесвирусные инфекции у детей

А.И. Кусельман, И.Л. Соловьева, А.П. Черданцев Скачать в PDF

Подробнее

ОППОРТУНИСТИЧЕСКИЕ ИНФЕКЦИИ: ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ

Под общ. ред. проф. Ю.В. РЕДЬКИНА, канд. мед. наук О.А. МИРОШНИКА Скачать в PDF

Подробнее

Иммунная система человека и особенности патогенеза герпетической инфекции

Скачать в PDF

Подробнее

Лечащий врач

Скачать в PDF

Подробнее

Николай Николаевич Гаража: «58 лет профессиональной карьеры – это еще не предел»

Скачать в PDF

Подробнее

ОПЫТ ПРИМЕНЕНИЯ ПРОТИВОГЕРПЕТИЧЕСКОЙ ВАКЦИНЫ У ПАЦИЕНТА С ГЕНИТАЛЬНЫМ ГЕРПЕСОМ И ЭНДОМЕТРИОЗОМ. ОПИСАНИЕ КЛИНИЧЕСКОГО СЛУЧАЯ

Дедуль М.И., Ковалев Е.В., Кожар Е.Д., Прусакова О.И., Рождественская Т.А., Стуканова Е.Ю. Скачать в PDF

Подробнее

Фотосенсибилизированная фотомодификация крови в лечении хронической герпес-вирусной инфекции у пациенток с привычным невынашиванием беременности в анамнезе

Маркова Элеонора Александровна Скачать в PDF

Подробнее

ПРИМЕНЕНИЕ КУЛЬТУР КЛЕТОК ДЛЯ ВИРУСОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Р.Я. Подчерняева, М.В. Мезенцева, И.А. Суетина, О.А. Лопатина. Г.Р. Михайлова, А.Д. Петрачев, Л.А. Потапова, О.В. Бакланова, Е.Л. Фирсова, О.М. Гринкевич, Т.Н. Притчина, М.Н. Щетвин, Л.И. Руссу ФГБУ «НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского» Минздрава России, Москва, cells@rambler.ru В Лаборатории культур тканей НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского создана Коллекция перевиваемых соматических клеток позвоночных, которая входит в состав ПРИМЕНЕНИЕ КУЛЬТУР КЛЕТОК ДЛЯ ВИРУСОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Подробнее

Возможности персонализированной терапии с использованием скрининга лекарственных препаратов в педиатрии

Персонализированная медицина рассматривается как одно из наиболее перспективных направлений медицины XXI века [18]. Персонализированная медицина подразумевает назначение конкретного лекарства конкретному больному на основании фармакокинетических и фармакогеномных сведений. Целью персонализированной медицины является подбор оптимального препарата каждому конкретному пациенту. Персонализированная медицина позволяет выбрать препарат или комбинацию препаратов, а также их дозировки, наиболее подходящие данному пациенту по эффективности, Возможности персонализированной терапии с использованием скрининга лекарственных препаратов в педиатрии

Подробнее

Диагностика HHV-8 –индуцированной инфекции при Саркоме Капоши.

Львов Н.Д., Потапова Л.А., Мельниченко А.В., Мезенцева М.В.   Диагностика HHV-8 –индуцированной инфекции при Саркоме Капоши.     Вирус герпеса человека 8-го типа  (ВГ-8) HHV-8– или KSHV –герпесвирус, ассоциированный с саркомой Капоши вызывает прежде всего саркому Капоши (СК) — мультифокальное заболевание с преимущественным поражением кожных покровов и вовлечением внутренних органов и лимфатических узлов. Также вызывает  ряд других заболеваний – лимфопролиферативные заболевания  лимфомы, ангиоиммунобластоидную лимфоаденопатию, болезнь Кастлемана и др.[1, 2, 6] Известно 5 основных молекулярных субтипов (А-Е) вируса саркомы Капоши. А и С субтипы преимущественно преобладают в Диагностика HHV-8 –индуцированной инфекции при Саркоме Капоши.

Подробнее

ВЛИЯНИЕ СВЕЧЕВОЙ ФОРМЫ ВАКЦИНЫ «ВИТАГЕРПАВАК» НА ПОКАЗАТЕЛИ ИММУННОГО СТАТУСА У БОЛЬНЫХ ГЕНИТАЛЬНЫМ ГЕРПЕСОМ

Ф.Р.МАХМУДОВ, И.Ф.БАРИНСКИЙ    Герпетическая инфекция является одной из наиболее распространенных вирусных инфекций человека: у 90% взрослых людей в сыворотке крови выявляют антитела к вирусу простого герпеса ВПГ-1, у 73 % — к ВПГ-2, который чаще всего вызывает развитие генитального герпеса [2, 4, 5]. Герпетическая инфекция при всей ее тяжести является одним из немногих вирусных заболеваний, при ВЛИЯНИЕ СВЕЧЕВОЙ ФОРМЫ ВАКЦИНЫ «ВИТАГЕРПАВАК» НА ПОКАЗАТЕЛИ ИММУННОГО СТАТУСА У БОЛЬНЫХ ГЕНИТАЛЬНЫМ ГЕРПЕСОМ

Подробнее

Герпесвирусные инфекции у беременных. Терапевтическая тактика

Л.Б. Кистенева   Герпесвирусные инфекции у беременных. Терапевтическая тактика    Герпесвирусные инфекции (ГВИ), ассоциированные с цитомегаловирусом (ЦМВ), вирусом простого герпеса 1-2 типа (ВПГ), перенесенные женщиной во время беременности, повышают риск внутриутробного поражения  плода, развития патологии различных органов, формирования иммунодефицитов в постнатальном периоде. Для  ГВИ характерна длительная, пожизненная персистенции вируса с периодической реактивацией и перемежающимся вирусовыделением.   Факторами риска перинатального инфицирования плода являются: наличие активной ГВИ у матери, высокий уровень виремии, иммунодефицитное состояние матери, повышенная проницаемость фетоплацентарного барьера.   Патогенез ГВИ определяется взаимодействием между иммунным ответом хозяина Герпесвирусные инфекции у беременных. Терапевтическая тактика

Подробнее

ЛЕЧЕНИЕ СИНДРОМА ХРОНИЧЕСКОЙ УСТАЛОСТИ на основе методики иммунокоррекции, включающей применение противогерпесной вакцины «Витагерпавак» и пробиотиков «Гиалакт» и «Витанар».

М. И. Ковалев – профессор кафедры   акушерства и гинекологии №1   Первого МГМУ им. И. М. Сеченова,   д.м.н., академик ЛАН РФ    Этиология и патогенеза синдрома хронической усталости (СХУ).   Диагностика и лабораторные обследования больных.   Методика лечения.        Синдром хронической усталости (СХУ) –заболевание, характеризующееся длительной усталостью, повышенной утомляемостью, общей слабостью, не устраняющихся даже после продолжительного отдыха, лишающих больного активного участия в повседневной жизни.   Основная симптоматика заболевания в ЛЕЧЕНИЕ СИНДРОМА ХРОНИЧЕСКОЙ УСТАЛОСТИ на основе методики иммунокоррекции, включающей применение противогерпесной вакцины «Витагерпавак» и пробиотиков «Гиалакт» и «Витанар».

Подробнее

СИСТЕМА ПРЕДУПРЕЖДЕНИЯ РЕЦИДИВОВ ГЕРПЕТИЧЕСКОЙ РЕЦИДИВИРУЮЩИЙ ЭРОЗИИ РОГОВИЦЫ С ЦЕЛЬЮ СНИЖЕНИЯ УСТРАНИМОЙ СЛЕПОТЫ

Евг.А. Каспарова, Е.А. Каспарова, Н.Р. Марченко, Л.Л. Фадеева, И.Ф. Баринский, А.С. Павлюк, А.А. Каспаров. ФГБНУ НИИ глазных болезней РАМН, МНИОЦ «Новый Взгляд», ФГБУ «ФНИЦЭМ им.Н.Ф.Гамалеи» Минздрава России Рецидивирующая эрозия роговицы (РЭР) обычно развивается на глазах после травмы роговицы ногтем, веткой дерева или кустарника, листом бумаги и т.д [1,2,3] в сроки от нескольких дней до нескольких СИСТЕМА ПРЕДУПРЕЖДЕНИЯ РЕЦИДИВОВ ГЕРПЕТИЧЕСКОЙ РЕЦИДИВИРУЮЩИЙ ЭРОЗИИ РОГОВИЦЫ С ЦЕЛЬЮ СНИЖЕНИЯ УСТРАНИМОЙ СЛЕПОТЫ

Подробнее

Новые подходы к диагностике герпесвирусной инфекции у женщин с заболеваниями шейки матки

Д.м.н., профессор, руководитель Лаборатории герпесвирусов Львов Н.Д. К.м.н., ведущий научный сотрудник Панюкова Е.М. ФГБУ НИИ вирусологии при ФНИЦЭМ им. Гамалеи Министерства здравоохранения России Одним из важнейших достижений в изучении этиологии рака принято считать установление  факта причинно-следственной связи между папилломавирусной инфекцией (ПВИ) и раком шейки матки (РШМ) [7]. В настоящее время в мире ежегодно регистрируется до 500 000 новых случаев Новые подходы к диагностике герпесвирусной инфекции у женщин с заболеваниями шейки матки

Подробнее

Гиаферон (свечи) – комплексный противовирусный и иммуномодулирующий препарат, применяемый при лечении герпетической инфекции.

Лечение и профилактика рецидивов вирусных заболеваний, удерживающих первое место среди всей инфекционной патологии человека, является актуальной проблемой медицины 21 века.  В настоящее время, в арсенале практической медицины особое место занимают препараты интерферона, обладающие как противовирусной, так и иммуномодулирующей активностью. Интерфероны (ИФН), как факторы защиты организма и медиаторы иммунных реакций, обладают весьма широким спектром лечебного и Гиаферон (свечи) – комплексный противовирусный и иммуномодулирующий препарат, применяемый при лечении герпетической инфекции.

Подробнее

Гиаферон (свечи) — комплексный противовирусный и иммуномодулирующий препарат, применяемый при лечении герпетической инфекции

Самойленко И.И., Баринский И.Ф., Алимбарова Л.М., Тищенко А.Л. ФГБУ ФНИЦЭМ им. H.Ф. Гамалеи МЗ РФ; РУДН, Москва.  Лечение и профилактика рецидивов хронических вирусных заболеваний является актуальной проблемой медицины 21 века.  В настоящее время, в арсенале практической медицины при лечении герпетических инфекций особое место занимают препараты интерферона, обладающие как противовирусной, так и иммуномодулирующей активностью. Интерфероны (ИФН), как факторы защиты организма и медиаторы иммунных реакций, обладают весьма широким Гиаферон (свечи) — комплексный противовирусный и иммуномодулирующий препарат, применяемый при лечении герпетической инфекции

Подробнее

Витагерпавак — инактивированная специфическая вакцина против вирусов простого герпеса 1 и 2 типов как средство иммунопрофилактики при хронической герпетической инфекции

Баринский И.Ф., Лазаренко А.А., Алимбарова Л.М., Сергеев О.В., Махмудов Ф.Р., Мордвинцева Э.Ю.  ФГБУ ФНИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи Минздрава России, Москва  Хроническая герпетическая инфекция является широко распространенным в мире заболеванием. 90 % населения планеты являю носителями вируса герпеса простого (ВПГ).  Хроническая герпетическая инфекция — это иммунодефицитное заболевание с пожизненной персистенцией вируса в клетках ганглиев, характеризуется периодическими обострениями с появлением клинических признаков, Витагерпавак — инактивированная специфическая вакцина против вирусов простого герпеса 1 и 2 типов как средство иммунопрофилактики при хронической герпетической инфекции

Подробнее

Разработка технологии получения свечевой формы препарата иммуноглобулинов человека с высокими титрами антител к вирусам простого герпеса 1 и 2 типов для лечения хронических форм герпетической болезни

Лазаренко А.А.1, Алимбарова Л.М. 1, Мордвинцева Э.Ю.2, Баринский И.Ф. 1 Разработка технологии получения свечевой формы препарата иммуноглобулинов человека с высокими  титрами антител к   вирусам простого герпеса 1 и 2 типов для лечения хронических форм  герпетической болезни 1ФГБУ «ФНИЦ ЭМ им. Н.Ф. Гамалеи» МЗ РФ, 123098, Москва, 2ЗАО «ФИРМА «ВИТАФАРМА»,  125124, Москва  Герпесвирусная инфекция (ГИ), обусловленная вирусами простого герпеса 1 и 2 типов (ВПГ-1, ВПГ-2) является актуальной проблемой здравоохранения [1].   Терапия ГИ Разработка технологии получения свечевой формы препарата иммуноглобулинов человека с высокими титрами антител к вирусам простого герпеса 1 и 2 типов для лечения хронических форм герпетической болезни

Подробнее

К вопросу о рациональной терапии герпесвирусной инфекции.

Алимбарова Л.М. К вопросу о рациональной терапии герпесвирусной инфекции. ФГБУ «ФНИЦ ЭМ им. Н.Ф. Гамалеи» МЗ РФ, 123098, Москва Герпесвирусная инфекция (ГИ) является одним из наиболее распространенных и социально-значимых инфекционных заболеваний человека. Возбудителем болезни является вирус простого герпеса (ВПГ) – ДНК-содержащий вирус семейства Herpesviridae. Выделяют 2 серотипа вируса простого герпеса: ВПГ-1 типа и ВПГ-2 типа. К вопросу о рациональной терапии герпесвирусной инфекции.

Подробнее
mok-youРазработка Маркетингового Агентства MokYou